1ICS65.020.30 CCSB41T/ZNZ 浙江省农产品质量安全学会团体标准 T/ZNZ432—2025 规模化羊场布鲁氏菌病净化技术规范 Technicalspecificationofeliminationforbrucellosisinlarge-scale sheepfarms 2025-12-30发布 2026-01-30实施 浙江省农产品质量安全学会  发布 全国团体标准信息平台 2前  言 本文件按照GB/T1.1—2020《标准化工作导则第1部分：标准化文件的结构和起草规则》的规定起 草。 请注意本文件的某些内容可能涉及专利。本文件的发布机构不承担识别专利的责任。 本文件由浙江省农产品质量安全学会提出并归口。 本文件起草单位：浙江省动物疫病预防控制中心、浙江大学、浙江省农业科学院。 本文件主要起草人：吴雪军、周彩琴、章杭建、张红丽、章晓炜、李肖梁、云涛、朱寅初、叶伟成、 付媛。 全国团体标准信息平台 3规模化羊场布鲁氏菌病净化技术规范 1范围 本文件规定了规模化羊场布鲁氏菌病净化的核心技术内容，包括净化措施、净化标准、净化维持等 技术要求。 本文件适用于非免疫规模化羊场布鲁氏菌病净化。 2规范性引用文件 下列文件中的内容通过文中的规范性引用而构成本文件必不可少的条款。其中，注日期的引用文件， 仅该日期对应的版本适用于本文件；不注日期的引用文件，其最新版本（包括所有的修改单）适用于本 文件。 GB/T18646-2025动物布鲁氏菌病诊断技术 GB/T19489实验室生物安全通用要求 GB/T36195畜禽粪便无害化处理技术规范 NY/T541-2016兽医诊断样品采集、保存与运输技术规范 疫控卫〔2022〕172号《布鲁氏菌病防控技术要点（第一版）》 农医发〔2017〕25号《病死及病害动物无害化处理技术规范》 疫控综〔2025〕42号《动物疫病净化场评估技术规范（2025版）》 3术语和定义 下列术语和定义适用于本文件。 3.1 规模化羊场large-scalesheepandgoatfarm 具有独立封闭的饲养管理区域，年出栏200只以上，依法备案并取得《动物防疫条件合格证》的羊 场。 3.2 布鲁氏菌病净化brucellosiseradication 在某限定规模化羊场，通过有计划地监测、检疫、隔离、消毒、淘汰、扑杀、无害化处理等一系列 技术和生物安全管理措施，逐步消灭和清除布鲁氏菌，最终达到并维持在该范围内动物个体不发病和无 感染状态的过程。 全国团体标准信息平台 44缩略语 下列缩略语适用于本文件。 cELISA：竞争酶联免疫吸附试验（CompetitiveEnzymeLinkedImmunosorbentAssay） FPA：荧光偏振检测方法（FluorescencePolarizationAssay） Real-timePCR：实时荧光PCR反应（Real-timepolymerasechainreaction） RBT：虎红平板凝集试验（RoseBengalTest） 5布鲁氏菌病诊断 布鲁氏菌病诊断按照GB/T18646-2025动物布鲁氏菌病诊断技术中9.2规定的方法进行。 6净化措施 6.1技术路线 图1技术路线图 6.2检测 6.2.1样品采集 血清学样品：所有成年羊群无菌采集全血，每份不少于3mL，分离血清，-20℃保存。 病原学样品：按照GB/T18646-2025中6.3.3、6.3.4、6.3.5的规定执行。 样品的保存、运输及生物安全按照NY/T541执行。 实验室检测中涉及的生物安全，应符合GB/T19489的规定。 全国团体标准信息平台 56.2.2样品处理 血清学样品恢复至室温待检。 病原学样品应在II级生物安全柜中处理。拭子样品处理时，可将采自同一栏舍的样品混样检测，宜 不超过10份。组织样品每份取1g~2g，加入2~5倍体积的PBS研磨制成匀浆，3000r/min离心10min后， 取上清液200μL，待检。 6.2.3样品检测 血清学样品宜采用RBT、cELISA等方法检测，具体操作和判定标准按照GB/T18646-2025中8.2、8.6 执行。 病原学样品检测采用实时荧光PCR扩增方法进行检测，具体操作和判定标准按照GB/T18646-2025 中7.3执行。 6.3阳性羊扑杀和无害化处理 对检出的阳性羊只按照《病死及病害动物无害化处理技术规范》的要求，进行扑杀并无害化处理。 6.4分群隔离 全群检测未检出血清学阳性或病原学阳性的养殖场，确认为假定阴性场，所有羊只确认为假定阴性 群。 有检出血清学阳性或病原学阳性的场确认为阳性场。对阳性场进行分群隔离，阳性羊进行扑杀，所 在栏舍的其他羊只确定为布鲁氏菌病阳性群，所在群体限制移动。 未检出血清学阳性或病原学阳性的群体，间隔2个月再抽检1次（抽样数量按置信水平95%，预期流 行率3%进行计算，抽样数量参照附录A），若连续两次未检出血清学阳性或病原学阳性羊，确定为假定 布鲁氏菌病阴性群体。若检出阳性羊，按阳性畜群处理。 6.5阳性群监测 布病阳性群每隔1个月全部检测一次，直至连续三次未检出阳性羊，确定为假定布鲁氏菌病阴性群 体；若检出阳性羊只，则重复6.3、6.4步骤。 6.6假定阴性群体检测 每半年全部采样检测1次，连续3次未检出阳性羊，确定为假定布鲁氏菌病净化群体。若检出阳性羊， 则按照6.3、6.4规定的程序执行。 7净化标准 同时满足以下要求，视为达到非免疫净化标准： ——成年羊群抽检，布鲁氏菌抗体检测均为阴性； ——连续两年以上无临床病例； ——现场综合审查并打分，必备条件全部满足，总分不低于80分，且关键项（*项）全部满分。现 场综合审查评分表按照附录B执行。 8无害化处理 全国团体标准信息平台 68.1病死羊处理 对病死的、扑杀的布病阳性羊以及流产的胎儿、胎衣、排泄物等进行无害化处理，处理过程需满足 《病死及病害动物无害化处理技术规范》的要求。 8.2粪污 粪污处理按照GB/T36195执行。 8.3医疗废弃物 使用过后的疫苗瓶、一次性注射器、未用完的疫苗、防护服、口罩、手套等废弃物，委托有相应资 质的机构进行无害化处理。 9清理消毒 9.1环境清理 及时清理养殖场场内的垃圾，做到定点存放，及时处理；定期开展灭蝇、灭鼠工作；养殖场内禁止 饲养其他陆生动物。 9.2环境消毒 9.2.1日常消毒 圈舍宜用1∶400氯制剂或无家畜时用2%~3%的氢氧化钠消毒，每周2次；场区、主干道及堆粪场用3% 氢氧化钠喷洒消毒，每周2次；生产用具用1∶400氯制剂浸泡或喷洒消毒；饲槽水槽用1∶400氯制剂清 洗消毒，每周2次；隔离舍、装卸台、磅秤及周转区周围环境，在每次畜群流动前后，用2%~3%的氢氧化 钠或1∶400氯制剂消毒1次；进场车辆用1∶400氯制剂喷雾消毒；更衣室用1∶800氯制剂每天消毒1次， 下班后用紫外线进行消毒。 9.2.2紧急消毒 对阳性动物所在的栏舍、用具、物品等，应每天至少2次严格消毒，持续2周以上。污染的垫料、饲 草和粪便等，可采取深埋发酵或焚烧的方式无害化处理。产房每次使用后立即用2%~3%的氢氧化钠或1∶ 400氯制剂进行消毒。 10净化维持 羊场达到净化指标中相关标准或通过省级及以上布鲁氏菌病净化场评估后，每年开展1次布鲁氏菌 病净化维持抽检，检测方法和抽样数量见表1，结果应为阴性；若检出阳性羊，立即开展全群采样检测， 隔离阳性动物并按照6.4规定的程序执行。 抽样监测情况见下表1 全国团体标准信息平台 7检测项±í1 ά³Ö¼à²âÒ»ÀÀ±í 目 检测方法 抽样种群 抽样数量 样本类型 布鲁氏菌病抗体cELISA或FPA 全群 抽样数量按置信水平95%，预期流行率3%进行计 算，抽样数量参照附录A，覆盖不同栏舍。血清 11人员防护 11.1防护要求 按照从事的工作种类进行分级防护。一般饲养人员进入圈舍应更换工作服，穿戴胶鞋、手套、口罩 等防护用品，并通过消毒通道进入；开展采样检测、疫病诊断、接羔、剪毛、无害化处理、消毒、清粪 等工作的人员，应佩戴医用防护口罩、护目镜，穿戴防护服、胶鞋、手套等防护用品，并通过消毒通道 进入。工作结束后，脱去防护用品，用清水冲洗双手，有条件的养殖场可设置淋浴间，在员工工作结束 后淋浴更衣再返回生活区。 11.2定期体检 所有新入职的员工，在入职前应进行布病检测。阳性场的员工每半年进行一次布病体检；阴性场每 年进行一次布病体检。发现布病感染的人员，应及时就医，调离养殖岗位。建议员工离职时也进行一次 体检。 12检疫监管 12.1调入管理 鼓励养殖场自繁自育。如确需引种的，应从无疫小区、净化场进行引种，严禁从高风险区（免疫区） 或布鲁氏菌病阳性场引进羊只。如引进精液，要查验其采集、储存、销售等记录，确认对应供体的健康 状况，同时对精液进行抽检，使用荧光定量PCR检测为阴性方可使用。 养殖场不宜进行短期育肥。如确需补栏，尽量从单一正规渠道购买，选择防疫规范、口碑良好的规 模化场，要求提供完整的检疫证明和免疫记录，确保羊健康状况可追溯。 引入前先备案，对新引入羊只要进行隔离观察30天，并及时上报，开展布病抗体检测，鼓励有条件 的场开展病原学检测，阴性方可混群。 12.2调出管理 羊只调出须产地检疫合格。 13制度和档案管理 13.1制度管理 全国团体标准信息平台 8养殖场应建立适合本场实际的疫病防治培训制度和培训计划、车辆及人员出入场区消毒及管理制 度、人员防护、布病定期体检等制度和引种管理、无害化处理、投入品（含饲料、兽药、生物制品）使 用管理制度、隔离管理、粪污处理等制度以