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书书书  中华人民共和国出入境检验检疫行业标准 犛 犖/犜4 6 2 4.6—2 0 1 6 入境环保用微生物菌剂检测方法第6部分:金黄色葡萄球菌 犕 犲 狋 犺 狅 犱 狊犳 狅 狉犲 狓 犪 犿 犻 狀 犪 狋 犻 狅 狀狅 犳 犻 犿 狆狅 狉 狋犿 犻 犮 狉 狅 犫 犻 犪 犾犫 犾 犲 狀 犱 狊 犻 狀狋 犺 犲犲 狀 狏 犻 狉 狅 狀 犿 犲 狀 狋 犪 犾狆狉 狅 狋 犲 犮 狋 犻 狅 狀 —犘 犪 狉 狋6:犛 狋 犪狆犺狔犾 狅 犮 狅 犮 犮 狌 狊犪 狌 狉 犲 狌 狊 2 0 1 60 82 3发布 2 0 1 70 30 1实施 中 华 人 民 共 和 国 国家质量监督检验检疫总局发 布 rHgCb@g · ykbûR60u5[PO –0SÑU.书书书前  言   S N/T4 6 2 4《入境环保用微生物菌剂检测方法 》共分为1 7部分: — — —第1部分:地衣芽孢杆菌 ; — — —第2部分:短小芽孢杆菌 ; — — —第3部分:巨大芽孢杆菌 ; — — —第4部分:嗜酸氧化亚铁硫杆菌 ; — — —第5部分:β型溶血性链球菌 ; — — —第6部分:金黄色葡萄球菌 ; — — —第7部分:沙门氏菌 ; — — —第8部分:志贺氏菌 ; — — —第9部分:致泻大肠埃希氏菌 ; — — —第1 0部分:淡紫拟青霉 ; — — —第1 1部分:雅致小克银汉霉 ; — — —第1 2部分:哈茨木霉 ; — — —第1 3部分:黄孢原毛平革菌 ; — — —第1 4部分:焦曲霉; — — —第1 5部分:解淀粉芽孢杆菌 ; — — —第1 6部分:类产碱假单胞菌 ; — — —第1 7部分:恶臭假单胞菌 。本部分为 S N/T4 6 2 4的第6部分。本部分按照 G B/T1. 1—2 0 0 9给出的规则起草 。本部分由国家认证认可监督管理委员会提出并归口 。本部分起草单位 :中华人民共和国辽宁出入境检验检疫局 。本部分主要起草人 :李成镛、王嫱、蒋施、刘瑜、侯彤言、付洋、王芳。 Ⅰ犛 犖/犜4 6 2 4.6—2 0 1 6 rHgCb@g · ykbûR60u5[PO –0SÑU.入境环保用微生物菌剂检测方法第6部分:金黄色葡萄球菌 1 范围 S N/T4 6 2 4的本部分规定了入境环保用微生物菌剂卫生学检验金黄色葡萄球菌的形态学鉴定 、生化鉴定、普通P C R、实时荧光 P C R检测方法 。本部分适用于入境环保用微生物菌剂卫生学检验金黄色葡萄球菌的检测和鉴定 。 2 规范性引用文件 下列文件对于本文件的应用是必不可少的 。凡是注日期的引用文件 ,仅注日期的版本适用于本文件。凡是不注日期的引用文件 ,其最新版本 (包括所有的修改单 )适用于本文件 。 G B/T6 6 8 2 分析实验室用水规格和试验方法 3 主要试剂和培养基 3.1 实验用水应符合 G B/T6 6 8 2中一级水的规格 。 3.2 生理盐水 :见附录A中A. 1。 3.3 7. 5%氯化钠肉汤 :见A. 2。 3.4 血琼脂平板 :见A. 3。 3.5 B a i r d  P a r k e r 琼脂平板 :见A. 4。 3.6 脑心浸出液肉汤 (BH I) :见A. 5。 3.7 兔血浆:见A. 6。 3.8 革兰氏染色液 :见A. 7。 3.9 营养琼脂小斜面 :见A. 8。 3.1 0 DNA分子量标记 :1 0 0bpDNAl a d d e r 。 3.1 1 d NT P:d AT P、d TT P、d GT P、d C T P。 3.1 2 T B E:见A. 9。 3.1 3 犜 犪狇DNA聚合酶。 3.1 4 细菌基因组 DNA提取试剂盒 。 3.1 5 琼脂糖。 3.1 6 溴化乙锭 。 4 主要仪器和设备 4.1 电子天平 (感量0. 0 1g) 。 4.2 恒温培养箱 :3 6℃±1℃ 。 4.3 恒温水浴锅 。 4.4 台式冷冻离心机 (最高转速 1 50 0 0r /m i n) 。 1犛 犖/犜4 6 2 4.6—2 0 1 6 rHgCb@g · ykbûR60u5[PO –0SÑU.4.5 P C R扩增仪。 4.6 实时荧光 P C R仪。 4.7 微量移液器和灭菌吸头 :1 0μL、2 0μL、2 0 0μL、10 0 0μL。 4.8 高压灭菌锅 。 4.9 P C R超净工作台 。 4.1 0 电泳仪。 4.1 1 核酸/蛋白分析仪 。 4.1 2 凝胶成像系统 。 4.1 3 无菌培养皿 :直径9 0mm。 5 样品制备 以无菌操作取 1g(mL)样品加入到 1 0 0mL 生理盐水中混匀 ,从中移取 2 5mL加入到2 2 5mL 灭 菌生理盐水中混匀 。取样过程中 ,在样品旁边放置 1个营养琼脂平板作为空白对照 。 6 形态学及生化鉴定 6.1 增菌 从上述样品匀液中取 2 5mL加入到2 2 5mL 的7. 5%氯化钠肉汤的均质袋中混匀 ,于3 6℃±1℃培养1 8h~2 4h。金黄色葡萄球菌在 7. 5%氯化钠肉汤中呈混浊生长 。将上述培养物 ,分别划线接种到 B a i r d  P a r k e r 平板和血平板 ,血平板3 6℃±1℃ 培养1 8h~2 4h。B a i r d  P a r k e r 平板3 6℃±1℃ 培养 1 8h~2 4h观察记录菌落特征 ,必要时可将培养时间延长至 4 5h~4 8h。 6.2 分离 金黄色葡萄球菌在 B a i r d  P a r k e r 平板上,菌落直径为 2mm~3mm,颜色呈灰色到黑色 ,边缘为淡 色,周围为一混浊带 ,在其外层有一透明圈 。用接种针接触菌落有似奶油至树胶样的硬度 ,偶然会遇到非脂肪溶解的类似菌落 ,但无混浊带及透明圈 。长期保存的冷冻或干燥食品中所分离的菌落比典型菌落所产生的黑色淡些 ,外观可能粗糙并干燥 。在血平板上 ,形成菌落较大 ,圆形、光滑凸起 、湿润、金黄色 (有时为白色 ) ,菌落周围可见完全透明溶血圈 。挑取上述菌落进行革兰氏染色镜检及血浆凝固酶试验 。 6.3 染色、镜检 染色镜检 :金黄色葡萄球菌为革兰氏阳性球菌 ,排列呈葡萄球状 ,无芽孢,无荚膜,直径约为 0. 5μm~1μm。 6.4 血浆凝固酶试验 挑取B a i r d  P a r k e r 平板或血平板上可疑菌落 1个或以上 ,分别接种到 5mLBH I 和营养琼脂小斜 面,3 6℃±1℃ 培养1 8h~2 4h。取新鲜配置兔血浆 0. 5mL,放入小试管中 ,再加入BH I培养物0. 2mL~0. 3mL,振荡摇匀 ,置于 3 6℃±1℃ 恒温箱或水浴箱内 ,每3 0m i n 观察一次 ,观察6h,如呈现凝固 (即将试管倾斜或倒置时 ,呈现凝块)或凝固体积大于原体积的一半 ,被判定为阳性结果 。同时以血浆凝固酶试验阳性和阴性葡萄球菌菌株的肉汤培养物作为对照 。也可用商品化的试剂 ,按说明书操作 ,进行血浆凝固酶试验 。结果如可疑 ,挑取营养琼脂小斜面的菌落到 5mLBH I ,3 6℃±1℃ 培养1 8h~4 8h,重复试验 。 2犛 犖/犜4 6 2 4.6—2 0 1 6 rHgCb@g · ykbûR60u5[PO –0SÑU.6.5 结果判定和报告 综合6. 2、6. 4的结果,报告1g(mL)样品中检出 (或未检出 )金黄色葡萄球菌 。 7 分子生物学检测 (选做) 7.1 细菌模板 犇 犖 犃的提取 7.1.1 直接提取法 取6. 1中菌液2mL加入2mL无菌离心管中 ,1 00 0 0r /m i n离心2m i n,尽量弃净上清 ,沉淀加入 T E 1 0 0μL、1 0mg/mL溶菌酶1 0 0μL,3 7℃温育3 0m i n,1 20 0 0r /m i n离心2m i n,沉淀加入 T E缓冲 液6 0 0μL重悬,再加入1 5mg/mL蛋白酶K 2 5μL,5 5℃温育1h后沸水浴 1 0m i n,1 20 0 0r /m i n离心 5m i n,取上清于 -2 0℃保存以待检测 。 7.1.2 有机溶剂提取法 取6. 1中菌液2mL加到2mL无菌离心管中 ,1 00 0 0r /m i n离心2m i n,弃上清,尽量弃净上清 ,沉 淀加入T E缓冲液5 7 0μL重悬,然后加入 1 0mg/mL溶菌酶1 0 0μL,3 7℃温育3 0m i n,再加入1 0% S D S3 0μL,6 5℃温育1 0m i n,加入等体积的酚混匀 ,1 20 0 0r /m i n离心1 0m i n,取上清移入一新离心管 中,重复一次 ,两次酚抽提后取上清加等体积的酚 /氯仿(1∶1,体积比)混匀,1 20 0 0r /m i n离心1 0m i n, 取上清再移入一新离心管中 ,加等体积的无水乙醇 ,1/1 0体积的3m o l/L乙酸钠,轻缓颠倒混匀 , 1 20 0 0r /m i n离心1 0m i n,弃上清,沉淀用5 0 0μL7 5%乙醇洗两次 ,离心管开盖室温放置数分钟使乙 醇挥发,加入1 0 0μL无菌水(预先加热至 6 5℃有利于DNA溶解) ,-2 0℃保存以待检测 。 7.1.3 试剂盒法 使用商品化的细菌基因组 DNA提取试剂盒 ,具体提取操作参照说明书进行 。 7.2 犇 犖 犃质量检测 将提取的 DNA用1. 0%含溴化乙锭 (或等效染料 )的琼脂糖凝胶进行完整性检测 。然后

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