ICS 07.080 CCS A 40 DB15 内 蒙 古 自 治 区 地 方 标 准 DB15/T 2024 —2020 牛和水牛源性成分同步检测方法 实时荧光 PCR法 Real-time PCR Method for Authentification o f Cattle and Buffalo Derived Materials 2020-10-20发布 2020-11-20实施 内蒙古自治区市场监督管理局 发布 DB15/T 2024—2020 I 前 言 本文件按照 GB/T 1.1 -2020《标准化工作导则 第1部分：标准化文件的结构和起草规则》的规定起 草。 本文件由锡林郭勒职业学院、 锡林郭勒食品 药品检验检测和风险评估中心提出。 本文件由内蒙古自治区肉乳标准化 技术委员会（SAM/TC 39）归口。 本文件起草单位： 锡林郭勒职业学院、 锡林郭勒食品 药品检验检测和风险评估中心。 本文件主要起草人： 郭梁、李春冬、郭元晟、其勒木格、徐伟良、刘国强、罗建兴 。DB15/T 2024—2020 1 牛和水牛源性成分同步检测方法 实时荧光 PCR法 1 范围 本文件描述了动物产品（肉、乳）中牛和水牛源性成分的实时荧光 PCR检测方法。 本文件适用于鲜肉、鲜乳、加工肉制品、加工乳制品中牛和水牛源性成分的定性检测。 2 规范性引用文件 下列文件中的内容通过文中的规范性引用而构成本文件必不可少的条款。其中，注日期的引用 文件，仅该日期对应的版本适用于本文件；不注日期的引用文件，其最新版本（包括所有的修改单） 适用于本文件。 GB/T 6682 分析实验室用水规格和试验方法 GB/T 27403 实验室质量控制规范 食品分子生物学检测 3 术语和定义 下列术语和定义适用于本文件。 3.1 实时荧光 PCR real time PCR 在PCR反应体系中加入 荧光基团，利用荧光信号 的积累实时 检测整个PCR过程，对未知模板进行 定性或定量分析。 3.2 Ct值 cycle threshold 每个反应管内的荧光信号达到设定阈值时所经历的循环数。 3.3 阳性对照 positive control 用已知含有牛和水牛源性成分的样品作阳性 对照。 3.4 阴性对照 negative control 用已知不含有牛和水牛源性成分的样品作阴性对照。 DB15/T 2024—2020 2 3.5 空白对照 blank control 用等体积的灭菌水代替模板 DNA作空白对照。 4 原理 利用不同荧光 基团标记特异性牛和水牛探针以及质控探针，采用多重实时荧光 PCR技术，对提 取于鲜肉、鲜乳、加工肉制品、加工乳制品的 DNA进行扩增。在同一反应中对牛和水牛特异基因以 及质控基因同时扩增，三种荧光同时检测。其中，同管质控探针的检测旨在监控扩增反应是否正常 进行，避免假阴性结果。通过评价 Ct值判断动物产品（肉、 乳）是否含有牛和水牛源性成分。 5 试剂和材料 除另有规定外，所有试剂均为 分析纯。实验用水为 符合GB/T 6682 规定的一级水。 5.1 三氯甲烷。 5.2 异戊醇。 5.3 异丙醇。 5.4 95%乙醇。 5.5 75%乙醇。 5.6 CTAB提取液：称取10 g CTAB （十六烷基三甲基溴化铵）、 40.6 g NaCl 、6.06 g Tris base （三羟甲基氨基甲烷）、 3.94 g Na 2EDTA（乙二胺四乙酸二钠） ，加入800 mL的水，在 65 ℃水浴 加热溶解，用 HCl调节pH至8.0，加水定容至 1000 mL，在121 ℃条件下，灭菌 30 min。使用前加 入终浓度为 2%的β-巯基乙醇。 5.7 乳化剂：量取 20 mL Triton X -100（聚乙二醇辛基苯基醚， 90%）、125 mL乙醇（95%）、855 mL NaCl溶液（0.9 g/L），加水定容至 1000 mL，在121 ℃条件下，灭菌 30 min。 5.8 PBS缓冲液（磷酸缓冲液） ：称取8 g NaCl 、0.2 g KCl 、1.44 g Na 2HPO4、0.24 g KH 2PO4，加 入800 mL水溶解，用 HCl调节pH至7.4，加水定容至 1000 mL，在121 ℃条件下，灭菌 30 min。 5.9 实时荧光PCR反应混合液： 1 U～2 U的Taq酶、1×PCR缓冲液、 2.5 mmol/L ～4.0 mmol/L 的 Mg2+、0.2 U～1 U的UNG酶、0.2 mmol/L 的dNTP。也可以使用同等效果的商品试剂盒。 5.10 牛和水牛 源性成分扩增引物和探针详见表 1。 表1 引物和探针序列 名称 序列（5’～ 3’） 目标基因 /大小 正向引物 TTGAAYTAGGCCATGAAGC 线粒体12S rRNA 基因 牛120 bp 水牛120 bp 反向引物 CTTACCTTGTTACGACTTGTCTC 牛特异性探针 FAM-CTCTCATGTAGCTAGTGCGTTTAAATAGGG -TAMRA DB15/T 2024—2020 3 表1 引物和探针序列 （续） 名称 序列（5’～ 3’） 目标基因 /大小 水牛特异性探针 HEX-CTCTCATGTGGTTAGTGCATTTAAATAGGG -TAMRA 质控探针 ROX-ACACACCGCCCGTCACCCT -BHQ-2 注：用灭菌水分别将上述引物和探针稀释到 10 mol/L，探针需避光保存 ，序列中 Y代表T/C。 6 仪器和设备 6.1 实时荧光PCR仪：通道数≥ 3，温度控制精度＜± 0.1 ℃。 6.2 核酸蛋白 分析仪或紫外分光光度计。 6.3 离心机：离心力 ≥12000 g。 6.4 微量移液器： 0.5 L～10 L，10 L～100 L，20 L～200 L，100 L～1000 L。 6.5 金属浴或恒温水浴锅 ：温度控制精度＜± 0.5 ℃。 6.6 pH计：0.01级。 6.7 均质器。 6.8 搅拌器。 6.9 分析天平：感量 0.1 g和0.0001 g 。 6.10 高压灭菌锅 。 6.11 旋涡混匀器。 7 分析步骤 7.1 样品制备 利用均质器将固态样品 充分混匀，装入清洁容器中，加封后， 注明标记。利用搅拌器将液态样 品充分混匀，装入清洁容器中，加封后， 注明标记。-20 ℃保存。 7.2 DNA提取 7.2.1 鲜肉及肉乳制品样品（固态） 称取100 mg均质固态样品于 1.5 mL灭菌离心管中；加入 700 L CTAB提取液（ 5.6），充分混匀， 置于65 ℃水浴30 min，期间每隔 5 min颠倒混匀一次； 13000 rpm 离心5 min，转移上清液于 新离心 管中，加入等体积三氯甲烷 和异戊醇混合液 （体积比为 24:1），旋涡混匀，13000 rpm 离心5 min， 取上清液于 新离心管中 ，加入等体积的异丙醇，充分混匀， 13000 rpm 离心5 min，弃去上清液， 75% 乙醇洗涤 两次（13000 rpm离心30 s弃去上清液 ），室温晾干，加入 20 L～50 L灭菌水溶解 ，-20 ℃ 保存。对阳性对照和阴性对照进行同法操作。用灭菌水代替样品进行核酸抽提作为提取空白对照 。 也可以使用同等效果的 DNA提取试剂盒。 DB15/T 2024—2020 4 7.2.2 鲜乳及乳制品样品（液态） 量取50 mL均质液态样品于 50 mL灭菌离心管中； 在4 ℃，7500 rpm 条件下，离心 30 min，去除 离心管上层乳脂和中间层的液体，保留底部沉淀； 向离心管 中加入600 L PBS缓冲液（ 5.8），将沉 淀悬浮并全部转移至 1.5 mL灭菌离心管中，在 4 ℃，13000 rpm 条件下，离心10 min，弃去上层液体， 保留底部沉淀 ；向离心管中 加入60 L乳化剂（5.7）和540 L PBS缓冲液（ 5.8），振荡至沉淀完全 悬浮，置于40 ℃恒温水浴 10 min，在4 ℃，13000 rpm 条件下， 离心10 min，弃去上清液保留底部 沉淀；加入500 L PBS缓冲液（ 5.8）悬浮沉淀， 在4 ℃，13000 rpm 条件下， 离心10 min，弃去上 清液保留底部沉淀 ；后续提取步骤按照 7.2.1方法进行 。用灭菌水代替样品进行核酸抽提作为提取空 白对照。也可以使用同等效果的 DNA提取试剂盒。 7.2.3 DNA浓度和纯度的测定 分别检测 260 nm和280 nm处的吸光值 A260和A280，按公式（ 1）计算DNA浓度，判定 DNA的纯度。当 DNA浓度在10 ng/L～100 ng/L，A260/A280比值在1.7～2.1之间时，适合 实时荧光 PCR反应。若浓度 大于100 ng/L时，建议用灭菌水稀释；若浓度小于 10 ng/L或比值小于 1.7时，建议重新进行 DNA 提取。 c = A×N ×50/1000 „„„„„„„„„„„ （1） 式中： c —DNA浓度，单位为微克每微升（