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(19)国家知识产权局 (12)发明 专利申请 (10)申请公布号 (43)申请公布日 (21)申请 号 202210344322.2 (22)申请日 2022.03.31 (71)申请人 龙岩学院 地址 364012 福建省龙岩市东肖北路1号 (72)发明人 戴爱玲 张鑫杰 王泓锴 薛少华  陈羽璇 刘小梅 杨小燕 范克伟  (74)专利代理 机构 福州君诚知识产权代理有限 公司 35211 专利代理师 张耕祥 (51)Int.Cl. C12Q 1/70(2006.01) C12Q 1/686(2018.01) C12N 15/11(2006.01) (54)发明名称 4型和6型猪细小病毒双重荧光定量PCR检测 的引物和探 针组及试剂盒 (57)摘要 本发明公开了4型和6型猪细小病毒双重荧 光定量PCR检测的引物和探针组及试剂盒, 所述 引物和探针组由PPV 6的上游引物PPV 6‑F、 下游引 物PPV6‑R和探针PPV6 ‑P以及PPV4的上游引物 PPV4‑F、 下游引物PPV4 ‑R和探针PPV4 ‑P组成, 所 述PPV6‑F、 PPV6‑R、 PPV6‑P、 PPV4‑F、 PPV4‑R、 PPV4‑P的核苷酸序列分别如SEQ  ID NO:1~SEQ  ID NO:6所示。 本发明建立的双重荧光定量PCR检 测方法对于猪细小病毒6型的检测灵敏度可达到 7.7copies/μl, 对于猪细小病毒 4型的检测灵敏 度可达到9.3copies/μl, 对于单个样本的检测 时间为1小时, 可同时进行大批量的样本检测, 具 有良好的特异性、 敏感性和稳定性, 可 以实现对 猪细小病毒6型和猪细小病毒4型 快速检测。 权利要求书1页 说明书6页 序列表1页 附图2页 CN 114908189 A 2022.08.16 CN 114908189 A 1.4型和6型猪细小病毒双重荧光定量PCR检测的引物和探针组, 其特征在于, 其由PPV6 的上游引物PPV6 ‑F、 下游引物PPV6 ‑R和探针PPV6 ‑P以及PPV4的上游引物PPV4 ‑F、 下游引物 PPV4‑R和探针PPV4 ‑P组成, 所述PPV6 ‑F、 PPV6‑R、 PPV6‑P、 PPV4‑F、 PPV4‑R、 PPV4‑P的核苷酸 序列及修饰依次如下 所示: PPV6‑F: TCCCGTTTCAAGACATTGTGA; PPV6‑R: GCCTTAGCACAT TCAACCAC; PPV6‑P: FAM‑TTCCTTCCTCCCACCAACCCA‑BHQ1; PPV4‑F: AAACATTCCGCTTTTGAGTTCCA; PPV4‑R: CCCACTTGGCAGTTTACCTC; PPV4‑P: VIC‑AATGCCAGGTCACCCGTCACA‑BHQ1。 2. 4型和6型猪细小病毒双重荧光定量PCR检测试剂盒, 其特征在于, 其包括权利要求1 所述的引物和探针组, 阳性对照, 标准质粒pMD ‑PPV6和pMD ‑PPV4, 阴性对照, 双蒸水, 探针 法 荧光定量预混试剂TaqMan  multiplex  qPCR master mix。 3.根据权利要求2所述的4型和6型猪细小病毒双重荧光定量PCR检测试剂盒, 其特征在 于, 所述标准质粒pMD ‑PPV6的拷贝数为7.7 ×109拷贝/μl, 标准质粒pMD ‑PPV4的拷贝数为 9.3×109拷贝/ μl。 4.根据权利要求2所述的4型和6型猪细小病毒双重荧光定量PCR检测试剂盒, 其特征在 于, 所述阴性对照为Rnase ‑free ddH2O, 所述阳性对照为PPV4和PPV6基因片段的混合重组 质粒。 5. 如权利要求2所述的4型和6型猪细小病毒双重荧光定量PCR检测试剂盒的使用方 法, 其特征在于, 包括以下步骤: (1) 提取样品DNA (2) 配置双重荧 光定量PCR反应 体系, 体系如下: TaqMan multiplex  qPCR master mix 10 μl; PPV6‑F 0.5 μl, 终浓度10 μM; PPV6‑R 0.5 μl, 终浓度10 μM; PPV6‑P 1 μl, 终浓度10 μM; PPV4‑F 0.5 μl, 终浓度10 μM; PPV4‑R 0.5 μl, 终浓度10 μM; PPV4‑P 0.5 μl, 终浓度10 μM; 模板DNA1.5 μl, 加入双蒸水将体系补足至20 μl; (3) 双重荧光定量PCR反应条件为: 95℃预变性5min; 循环反应包括95℃  10s, 58℃   30s, 共设置45个 循环, 并在6 0℃最后一秒设置收集 荧光信号。权 利 要 求 书 1/1 页 2 CN 114908189 A 24型和6型猪细小病毒双重荧光定量PCR检测的引物和探针组 及试剂盒 技术领域 [0001]本发明属于生物技术领域, 具体涉及4型和6型猪细小病毒双重荧光定量PCR检测 的引物和探针组及试剂盒。 背景技术 [0002]猪细小病毒(porcine  parvovirus, PPV)是一类单股线性DNA病毒, 无囊膜, 基因组 长度约为4.0~6.1kb。 1965年, PPV1首次分离于德国, 被认 为是引起世界范围内猪繁殖障碍 的主要原因之一, 且经常与PCV ‑2混合感染, 共同引起猪圆环病毒相关疾病(PCVAD)。 PPV4首 次发现于美国北卡罗来纳州, 并且与PCV2有较高的共感染率。 2014年, Ni等从流产胎儿的组 织样品中鉴定出PPV6, 并且该组织样品中不包含其他可造成繁殖障碍的病原, 包括PRV、 PRRSV、 PPV1、 PCV2、 CSFV、 SIV和布鲁氏杆菌。 随后, Schirt zinger等在美国 的PRRSV阳性样品 中检出PPV6。 目前PPV4与PPV6均在流产 胎儿中被发现, 并且具有较高感染率。 [0003]目前虽然针对PPV4及PPV6建立了相关的多重PCR方法, 但尚未发现基于TaqMan探 针的PPV4与PPV6的双重荧光定量PCR检测方法。 而普通PCR方法存在着灵敏度低、 产物需要 进行凝胶电泳实验进 行鉴定等缺点。 因此迫切需要一种能够同时鉴定PPV 4及PPV6的双重荧 光定量PCR检测方法。 发明内容 [0004]鉴于PPV4及PPV6的高感染率, 而目前针对PPV4和PPV6检测技术手段的缺乏, 本发 明提供4型和6型猪细小病毒双重荧光定量PCR检测的引物和 探针组及试剂盒。 建立的双重 荧光定量PCR检测方法对于猪细小病毒6型的检测灵敏度可达到7.7copies/ μl, 对于猪细小 病毒4型的检测灵敏度可达到9.3copies/ μl, 对于单个样本的检测时间为1小时, 可同时进 行大批量的样本检测, 具有良好的特异性、 敏感性和稳定性, 可以实现对猪细小病毒6型和 猪细小病毒4型 快速检测。 [0005]为了实现上述目的, 本发明采用如下技 术方案: [0006]4型和6型猪细小病毒双重荧光定量PCR检测的引物和探针组, 其 由PPV6的上游引 物PPV6‑F、 下游引物PPV6 ‑R和探针PPV6 ‑P以及PPV4的上游引物PPV4 ‑F、 下游引物PPV4 ‑R和 探针PPV4 ‑P组成, 所述PPV6 ‑F、 PPV6‑R、 PPV6‑P、 PPV4‑F、 PPV4‑R、 PPV4‑P的核苷酸序列及修 饰依次如下 所示: [0007]PPV6‑F: TCCCGTTTCAAGACATTGTGA(SEQ  ID NO:1) [0008]PPV6‑R: GCCTTAGCACAT TCAACCAC(SEQ ID NO:2) [0009]PPV6‑P: FAM‑TTCCTTCCTCCCACCAACCCA‑BHQ1(SEQ ID NO:3) [0010]PPV4‑F: AAACATTCCGCTTTTGAGTTCCA(SEQ ID NO:4) [0011]PPV4‑R: CCCACTTGGCAGTTTACCTC(SEQ ID NO:5) [0012]PPV4‑P: VIC‑AATGCCAGGTCACCCGTCACA‑BHQ1(SEQ ID NO:6)说 明 书 1/6 页 3 CN 114908189 A 3

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专利 4型和6型猪细小病毒双重荧光定量PCR检测的引物和探针组及试剂盒 第 1 页 专利 4型和6型猪细小病毒双重荧光定量PCR检测的引物和探针组及试剂盒 第 2 页 专利 4型和6型猪细小病毒双重荧光定量PCR检测的引物和探针组及试剂盒 第 3 页
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