ICS65.020.01 CCSB15 中华人民共和国国家标准 GB/T47390—2026 茄子抗黄萎病鉴定与评价技术规程 Technicalcodeofpracticeforidentificationandevaluationofeggplant resistancetoverticilliumwilt 2026-04-30发布 2026-11-01实施 国家市场监督管理总局 国家标准化管理委员会发布前 言 本文件按照GB/T1.1—2020《标准化工作导则 第1部分:标准化文件的结构和起草规则》的规定 起草。 请注意本文件的某些内容可能涉及专利。本文件的发布机构不承担识别专利的责任。 本文件由中华人民共和国农业农村部提出。 本文件由全国蔬菜标准化技术委员会(SAC/TC467)归口。 本文件起草单位:浙江省农业科学院、浙江省种子管理总站、杭州市富阳区农业技术推广中心、苍南 县农业技术推广站。 本文件主要起草人:王汉荣、武军、陈小央、吴早贵、王明玉、祝玮、胡敏骏、柯晶晶、金立新、沈年桥、 方丽。 ⅠGB/T47390—2026茄子抗黄萎病鉴定与评价技术规程 1 范围 本文件界定了茄子抗黄萎病鉴定的相关术语和定义,规定了鉴定流程和结果评价。 本文件适用于茄子(SolanummelongenaL.)抗黄萎病的鉴定与评价。 2 规范性引用文件 下列文件中的内容通过文中的规范性引用而构成本文件必不可少的条款。其中,注日期的引用文 件,仅该日期对应的版本适用于本文件;不注日期的引用文件,其最新版本(包括所有的修改单)适用于 本文件。 GB16715.3 瓜菜作物种子 第3部分:茄果类 NY/T2118 蔬菜育苗基质 3 术语和定义 下列术语和定义适用于本文件。 3.1 抗病性 diseaseresistance 植物所具有的能够克服或减轻病原物致病作用的可遗传性状。 3.2 抗性评价 resistanceevaluation 根据采用的技术标准判别植物对特定病害反应程度和抵抗水平的描述。 3.3 致病性 pathogenicity 病原物所具有的破坏寄主和引起病变的能力。 3.4 病情级别 diseaserating 人为定量植物个体或群体发病程度的数值化描述。 3.5 分离物 pathogenisolate 采用人工方法从植物发病部位分离获得的、在特定环境条件下培养的疑似病原物。 3.6 接种体 inoculum 用于接种以引起病害的病原物或病原物的一部分。 3.7 接种液 inoculumsuspension 用于接种的、含有接种体的悬浮液。 1GB/T47390—20263.8 发病率 incidenceofdisease 发病植株数占总植株数的百分率。 3.9 病情指数 diseaseindex 通过对植物个体发病程度即病情级别数值的计算获得的群体发病程度的数值化描述形式。 3.10 茄子黄萎病 eggplantverticilliumwiltdisease 由大丽轮枝菌(VerticilliumdahliaKleb.)引起的茄子黄萎病。 注1:也称黑心病、凋萎病。 注2:病原菌分类地位、孢子形态描述等见附录A。 4 鉴定流程 茄子抗黄萎病鉴定流程包括材料准备、抗性鉴定和结果评价3个阶段。鉴定流程如图1所示。 图1 茄子抗黄萎病鉴定流程 5 材料准备 5.1 接种准备 5.1.1 基本设备 无菌室、恒温培养箱、恒温振荡培养箱、超净工作台、高压灭菌锅、冰箱、温室(温度保持在20℃~ 30℃)、塑料盆、铝锅、电炉、培养皿、试管、剪刀、镊子、广口瓶、酒精灯、滤纸、三角瓶、各种培养基等。 5.1.2 接种体准备 从各地茄子黄萎病发病植株的病健交界处的茎杆中获取病组织;接种于水琼脂培养基(WA)平板 2GB/T47390—2026培养基,进行常规组织分离;于马铃薯葡萄糖琼脂培养基(PDA)平板培养基进行单孢纯化分离。分离 物经形态学和分子生物学鉴定,以及致病性测定确认为茄子黄萎病菌V.dahliaKleb.。选择分布较 广、致病力较强的茄子黄萎病菌的优势菌株作为用于人工接种鉴定的接种体,在PDA平板培养基上扩 繁,保存备用。 5.1.3 接种体悬浮液制备 在无菌操作下挑取已保存的茄子黄萎病菌菌丝块至PDA平板上,在23℃~26℃下进行菌种培养 活化,将直径2mm、活化的茄子黄萎病菌菌种培养物经无菌操作接种到马铃薯液体培养基中,随后置 于25℃±1℃振荡培养箱振荡培养10d~15d。用无菌纱布过滤菌丝,保留滤液,并制成浓度为每毫升 1.0×106个孢子~5.0×106个孢子的茄子黄萎病菌孢子悬浮液。 马铃薯液体培养基的配制:马铃薯200g,葡萄糖20g,蒸馏水1000mL,pH值7.0,121℃高压灭 菌20min。 5.2 鉴定用苗培育 5.2.1 种子质量 应符合GB16715.3的要求。 5.2.2 浸种催芽 鉴定的茄子种子先用55℃温水浸种15min,或用10%次氯酸钠溶液中浸泡5min~10min,清水 冲洗后,置28℃~30℃清水中浸种8h~10h后,分别于20℃16h和30℃8h变温催芽5d~6d。 5.2.3 播种 发芽后播植于温室,采用营养钵盆栽法进行育苗,育苗基质应符合NY/T2118的要求。将育苗基 质装入新的直径11cm~13cm、高10cm~13cm的塑料营养钵中,至2/3高度,排列整齐,播种前先用 自来水浇透育苗基质,随后将已催芽的待鉴定茄子品种(系)的种子播于上述塑料营养钵中,每钵2粒种 子,然后用泥炭育苗基质覆盖,以盖住种子为宜,2叶1心期定苗,每钵1株,待用。 5.2.4 接种前茄苗管理 播种后温室中进行培育,出苗前,温室温度保持在25℃~30℃,保持营养钵中基质干湿适宜;茄苗 出土后,温室温度保持在23℃~28℃,土壤相对湿度保持在60%~80%,正常栽培管理,不施用杀 菌剂。 6 抗性鉴定 6.1 对照品种设置 鉴定中设置一个感病对照品种,感病对照品种选用“七叶茄”,或在1.0×106个孢子/mL~5.0×106 个孢子/mL接种菌量下病情指数大于50.0的本地区常规感病品种,感病对照品种不应缺省。鉴定中可 增设一个在每毫升1.0×106个孢子~5.0×106个孢子接种菌量下,病情指数小于15.0的本地区常规抗 病对照品种。 6.2 鉴定方法 6.2.1 鉴定设计 各品种(系)随机排列,重复3次,每重复60株,共180株,并以对照品种在鉴定圃的四周设置保 护行。 3GB/T47390—20266.2.2 鉴定时间 每年4月~7月和9月~11月为茄子对黄萎病抗性鉴定与抗性评价的最佳时间。 6.2.3 接种时期 最佳接种时期为茄子苗3叶1心期~5叶1心期。 6.2.4 接种液配制 用无菌水稀释接种体悬浮液,配制成浓度为每毫升1.0×106个孢子~5.0×106个孢子的接种液。 6.2.5 接种方法 取出茄子幼苗,清洗去除根部基质,在距幼苗根尖端1cm处用剪刀断根,然后将幼苗根部浸泡在接 种体悬浮液中,20min后移植于营养钵。 6.2.6 接种后茄苗管理 茄苗接种后,控制温室温度保持在23℃~28℃,相对湿度85%~100%下保湿24h~48h,每天光 照12h~14h,适时浇水,保持正常栽培管理,不施用杀菌剂。 6.3 病情调查 6.3.1 调查时间 接种后20d~25d时进行调查。也可根据感病对照品种的病级扩展到最高病级的时间作适当 调整。 6.3.2 病情分级 病情分级与对应症状描述见表1。 表1 茄子黄萎病病情分级 病情分级 症状描述 0 茄子植株健康,无病症,生长正常 1 茄子植株只有第1真叶变黄萎蔫或卷曲 3 茄子植株第3真叶以下叶片卷曲或部分表现变黄萎蔫,叶脉呈黄色网纹状,或叶片脱落 5 茄子植株只有1片~3片新生的展开真叶表现健康,其余老叶变黄萎蔫卷曲或脱落,植株矮化或萎蔫 7 茄子植株只剩1片~2片心叶,其余所有展开的真叶全部脱落 9 茄子植株整株枯死 6.3.3 调查方法 根据病害症状描述,调查每份鉴定品种(系)的发病情况,逐份品种(系)进行分株调查,分别记载病 情分级。 4GB/T47390—2026