ICS 65.020.01 CCS B 04 15 内蒙古自治区 地方 标准 DB15/T 4111—2025 洋葱、大蒜病毒 RT-PCR检测技术规程 Code of practice for RT -PCR detection of viruses in onion and garlic 2025-07-10发布 2025-08-10实施 内蒙古自治区市场监督管理局 发布 DB15/T 4111 —2025 I 前言 本文件按照 GB/T 1.1 —2020《标准化工作导则 第1部分：标准化文件的结构和起草规则》的规定 起草。 本文件由内蒙古自治区果蔬标准化技术委员会（ SAM/TC 25 ）归口。 本文件起草单位：内蒙古农业大学、内蒙古自治区农牧业技术推广中心、内蒙古中天现代农牧业开 发有限责任公司、呼和浩特市农牧技术推广中心、乌拉特前旗农牧和科技局。 本文件主要起草人：李正男、张磊、孙平平、张称心、郑莎、徐文俊、苏敏、韩静宇、曹海、云梅、 赵栓、郭孟泽。 DB15/T 4111 —2025 1 洋葱、大蒜病毒鉴定技术 规程 1 范围 本文件规定了洋葱、大蒜病毒检测中的术语和定义、检测对象、抽样、取样、检测方法和判定规则 等内容。 本文件适用于洋葱、大蒜的病毒检测。 2 规范性引用文件 下列文件中的内容通过文中的规范性引用而构成本文件必不可少的条款。 其中， 注日期的引用文件， 仅该日期对应的版本适用于本文件；不注日期的引用文件，其最新版本（包括所有的修改单）适用于本 文件。 GB/T 34265 Sanger 法测序技术指南 GB/T 40974 核酸样本质量评价方法 SN/T 2497.21 进出口危险化学品安全试验方法 第21部分：琼脂糖 凝胶电泳试验 3 术语和定义 下列术语和定义适用于本文件。 RNA病毒 RNA viruses 核糖核酸病毒，其遗传物质为 RNA。 反转录 Reverse transcription （RT） 以RNA为模板，逆转录酶催化合成 DNA的过程。 互补DNA Complementary DNA （cDNA） 由逆转录酶催化合成的、与 RNA模板互补的 DNA。 聚合酶链式反应 Polymerase chain reaction （PCR） 利用DNA聚合酶， 对 DNA或cDNA模板的特定区域进行体外扩增的技术。 反应混合物通常由 DNA聚合酶、 脱氧核苷三磷酸、引物和缓冲液组成，反应过程主要包括变性、退火和延伸三个步骤。 DB15/T 4111 —2025 2 引物 primers 人工合成的具有一定长度的单链 DNA分子，与 DNA模板链的特定区域互补，其 3’末端在 PCR过程中作 为复制延伸的起始位点。 4 检测对象 主要洋葱 RNA病毒 黄瓜花叶病毒（ Cucumber mosaic virus ，CMV）。 韭葱黄条病毒（ Leek yellow stripe virus ，LYSV）。 洋葱黄矮病 毒（Onion yellow dwarf virus ，OYDV）。 胡葱黄条病毒（ Shallot yellow stripe virus ，SYSV）。 主要大蒜 RNA病毒 黄瓜花叶病毒（ Cucumber mosaic virus ，CMV）。 大蒜病毒 A（Garlic virus A ，GarV-A）。 大蒜病毒 B（Garlic virus B ，GarV-B）。 大蒜病毒 D（Garlic virus D ，GarV-D）。 大蒜病毒 E（Garlic virus E ，GarV-E）。 大蒜病毒 X（Garlic vi rus X，GarV-X）。 大蒜潜隐病毒（ Garlic latent virus ，GLV）。 韭葱黄条病毒（ Leek yellow stripe virus ，LYSV）。 洋葱黄矮病毒（ Onion yellow dwarf virus ，OYDV）。 5 取样 取样方法 采用5点法抽样。 种植面积小于 667 m2（含667 m2），抽检 100株。种植面积为 667 m2到6670 m2（含6670 m2），首个 667 m2抽100株，之后每增加 667 m2增检50株。超过 6670 m2，前6670 m2按上述方法抽样，之后每增加 667 m2增检20株。 6 取样方法 对样方内的所有洋葱、大蒜进行采样。折取地上部的叶、花苔等作为检测样品，折取的样品应立即 检测或液氮速冻后置于 -80 ℃超低温保存箱保存。 采样点距离检测点较远时， 应将洋葱、 大蒜整株挖出， 运到检测点。 7 检测方法 样品核酸提取 DB15/T 4111 —2025 3 选择市售的用于提取含有多糖多酚材料 RNA的试剂盒，按照试剂盒自带的说明书进行操作。核酸质 量评价按照 GB/T 40974 执行。 反转录 以提取的质量合格的总 RNA为模板，选择市售的具有基因组 DNA去除功能的反转录试剂盒进行反转 录，合成cDNA。反应体系和反应程序按照试剂盒自带的说明书进行设置。 PCR扩增 7.3.1 PCR反应体系 市售产品通常为预混液或单品，根据所选产品提供的说明书，进行 PCR反应混合物配制，并按说明 书指示加入 cDNA或DNA模板以及病毒检测引物。各种病毒的 特异性检测引物见表 1。 表1 洋葱、大蒜病毒的特异性检测引物 病毒名称 引物名称 引物序列 /（5’→ 3’方向） 目标DNA片段大小 /（bp） 寄主植物 CMV CMV-Fa GTTTATTTACAAGAGCGTACGG 650 洋葱、大蒜 CMV CMV-Rb GGTTCGAARRWATAACCGGG 650 洋葱、大蒜 GarV-A GarV-A-F CCATATGAACAATCCTGTTGATCC 756 大蒜 GarV-A GarV-A-R GGGATCCTTAGAACGTGATCATTGGAG 756 大蒜 GarV-B GarV-B-F CCATATGGGAGACAGGTCACAAGG 735 大蒜 GarV-B GarV-B-R GGGATCCCTAAAATGTGAGCATGAGCGG 735 大蒜 GarV-D GarV-D-F CCATATGAATGAACAAGGAAACAC 753 大蒜 GarV-D GarV-D-R GGGATCCTCAGAATGTGATCATTGGAGG 753 大蒜 GarV-E GarV-E-F CCATATGAACGACCCCACGAAC 759 大蒜 GarV-E GarV-E-R CGGATCCTTAGAATGTTATCATTGGGGG 759 大蒜 GarV-X GarV-X-F ATGGGYGATCGGAACCAAGGA 732 大蒜 GarV-X GarV-X-R TYAGAATGTGAGCATAAGGGG 732 大蒜 GLV GLV-F GTGGTNTGGAATTAC 308 大蒜 GLV GLV-R CAACATCGATTYTCTC 308 大蒜 LYSV LYSV-F TCACTGCATATGCGCACCAT 1020 洋葱、大蒜 LYSV LYSV-R GCACCATACAGTGAATTGAG 1020 洋葱、大蒜 OYDV OYDV-F GTTACCATCCAGGCCAAACA 225 洋葱、大蒜 OYDV OYDV-R AGTGATGCAGCTGAAGCATA 225 洋葱、大蒜 SYSV SYSV-F CACCNTAYATAGCRGARACAGCTCT 605 洋葱、大蒜 SYSV SYSV-R ACTGAAATGCGCCATTATYTGYCTA 605 洋葱、大蒜 a F表示上游引物。 b R表示下游引物。 7.3.2 PCR反应程序 95 ℃预变性 2 min。35个反应循环： 95 ℃变性20 s；退火20 s，退火温度按引物合成报告设置， 两个引物退火温度不一致时，取较低温度； 72 ℃延伸，延伸时间根据所选产品说明书提供的参数进行 计算。最后， 72 ℃终延伸 5 min。 DB15/T 4111 —2025 4 琼脂糖凝胶电泳检测 7.4.1 琼脂糖凝胶制备 用Tris-乙酸缓冲液溶解琼脂糖，制备质量体积比为 1%的琼脂糖凝胶。琼脂糖凝胶的制备按照 SN/T 2497.21执行。 7.4.2 电泳检测 用Tris-乙酸缓冲液，在水平板电泳槽中进行电泳。上样、电泳按照 SN/T 2497.21 执行。电泳结束 时，凝胶置于紫外灯或凝胶成像系统进行观测和拍照，获取的图片用于结果判定。 8 结果判定 异常结果 根据琼脂糖凝胶电泳图，与图中 DNA相对分子质量标准品相比，从阴性对照样品扩增到了预期大小 的DNA片段，或从阴性对照和阳性对照样品均未扩增到预期大小的 DNA片段。此时，判定为检测错误，应 重新进行检测。 阳性结果 从阴性对照样品未扩增到预期大小的 DNA片段，从被检测样品扩增到了预期大小的 DNA片段。有阳性 对照时，从阳性对照扩增的 DNA片段大小，与判定为阳性