ICS67.050 CCS C 53 中华人民共和国出入境检验检疫行业标准 SN/T5437—2022 出口动物源食品中苯海拉明残留量的测定 液相色谱-质谱/质谱法 Determination of diphenhydramine residue in foodstuffs of animal origin for export—LC-MS/MS method 2022-03-14发布 2022-10-01实施 中华人民共和国海关总署发布 以正式出版文本为准以正式出版文本为准前 言 本文件按照GB/T 1.1—2020《标准化工作导则 第1部分:标准化文件的结构和起草规则》的规定 起草。 请注意本文件的某些内容可能涉及专利。本文件的发布机构不承担识别专利的责任。 本文件由中华人民共和国海关总署提出并归口。 本文件起草单位:中华人民共和国合肥海关技术中心、中华人民共和国青岛海关、中华人民共和国 天津海关。 本文件主要起草人:吕亚宁、韩芳、郑平、王萍、张利刚、宋伟、丁磊、周典兵、盛旋。 Ⅰ 以正式出版文本为准以正式出版文本为准出口动物源食品中苯海拉明残留量的测定 液相色谱-质谱/质谱法 1 范围 本文件规定了出口动物源食品中苯海拉明残留量的液相色谱-质谱/质谱测定方法。 本文件适用于猪肉、牛肉、羊肉、猪肝、猪肾、猪肠和牛奶等动物源性食品中苯海拉明残留量的定量 测定和确证。 2 规范性引用文件 下列文件中的内容通过文中的规范性引用而构成本文件必不可少的条款。其中,注日期的引用文 件,仅该日期对应的版本适用于本文件;不注日期的引用文件,其最新版本(包括所有的修改单)适用于 本文件。 GB/T 6682 分析实验室用水规格和试验方法 3 术语和定义 本文件没有需要界定的术语和定义。 4 方法提要 试样中的苯海拉明用三氯乙酸-乙腈溶液提取,提取液经强阳离子交换固相萃取柱净化,液相色谱- 质谱/质谱仪测定,内标法定量。 5 试剂和材料 除非另有说明,所用试剂均为分析纯,水为GB/T 6682规定的一级水。 5.1 乙腈:色谱纯。 5.2 甲醇:色谱纯。 5.3 甲酸:色谱纯。 5.4 正己烷:色谱纯。 5.5 三氯乙酸。 5.6 氨水:含量为25%~28%。 5.7 苯海拉明标准物质:C17H22ClNO,CAS号.147-24-0,纯度大于等于99%。 5.8 氘代苯海拉明标准溶液:C17H18D3NO,CAS号.170082-18-5,100 μg/mL。 5.9 1%三氯乙酸溶液:称取10 g三氯乙酸(4.5),用水溶解,定容至1 000 mL,混匀。 5.10 1%三氯乙酸-乙腈溶液(3+7,体积比):量取300 mL1%三氯乙酸溶液(4.9)和700 mL乙腈 (5.1),混匀,现用现配。 5.11 20%氨水甲醇溶液:量取20 mL氨水(5.6)和80 mL甲醇(5.2),混匀。 1SN/T5437—2022 以正式出版文本为准5.12 0.1%甲酸溶液:量取1.0 mL甲酸(5.3),用水定容至1 000 mL,混匀。 5.13 0.1%甲酸-乙腈溶液(95+5,体积比):量取5 mL乙腈(5.1),用0.1%甲酸溶液(5.12)定容至 100 mL。 5.14 苯海拉明标准储备液:准确称取适量盐酸苯海拉明标准品(5.7),用少量水溶解后,再用乙腈 (5.1)定容,配制成浓度为100 mg/L的标准储备液,于0 ℃~4 ℃冷藏避光保存,有效期6个月。 5.15 苯海拉明标准中间液:准确吸取苯海拉明标准储备液(5.14)1 mL于100 mL容量瓶中,用乙腈 (5.1)定容至刻度,配制成浓度为1 mg/L的标准中间液,于0 ℃~4 ℃冷藏避光保存,保存期3个月。 5.16 苯海拉明-D3内标工作液:准确吸取苯海拉明-D3标准溶液(5.8)0.5 mL于100 mL容量瓶 中,用乙腈(4.1)定容至刻度,配制成浓度为500 μg/L的内标工作液,于0 ℃~4 ℃冷藏避光保存,保存 期3个月。 5.17 标准工作溶液:准确吸取一定量苯海拉明标准中间液(5.15)和苯海拉明-D3内标工作液 (5.16),用0.1%甲酸溶液-乙腈溶液(5.13)配制成浓度分别为1 μg/L、2 μg/L、5 μg/L、10 μg/L、 50 μg/L的系列标准工作液(苯海拉明-D3的内标浓度为10 μg/L),于0 ℃~4 ℃冷藏避光保存,保存 期1个月。 5.18 CNWBOND SCX固相萃取柱:苯磺酸型强阳离子交换柱,500 mg,6 mL,或相当者。使用前依 次用5 mL甲醇、5 mL水和5 mL1%三氯乙酸溶液-乙腈溶液(5.10)活化,保持柱体湿润。 5.19 微孔滤膜:通用型,0.22 μm。 6 仪器和设备 6.1 液相色谱-质谱/质谱仪,配电喷雾离子源(ESI)。 6.2 分析天平:感量分别为0.000 1 g和0.01 g。 6.3 组织捣碎机。 6.4 均质器:转速不低于10 000 r/min。 6.5 超声波振荡器。 6.6 冷冻离心机:转速不低于8 000 r / min。 6.7 固相萃取装置。 6.8 氮吹仪。 6.9 涡旋混合器 6.10 pH计。 6.11 离心管:聚乙烯,具塞,50 mL。 6.12 比色管:25 mL。 7 试样的制备和保存 7.1 猪肉、牛肉、羊肉、猪肝、猪肾和猪肠 取有代表性样品约500 g,用组织捣碎机充分捣碎,均分成两份,分别装入洁净的容器内,密封并标 明标记。如非立即进行前处理,于-18 ℃下冷冻保存。 7.2 牛奶 取有代表性样品约500 g,充分混匀,均分成两份,分别装入洁净容器,密封并标明标记,于0 ℃~ 4 ℃冷藏保存。 2SN/T5437—2022 以正式出版文本为准8 测定步骤 8.1 提取与净化 8.1.1 猪肉、牛肉、羊肉、猪肝、猪肾和猪肠 称取约2 g试样(精确到0.01 g)于50 mL具塞离心管中,准确加入100 μL苯海拉明-D3内标工 作液(5.16)和20 mL 1%三氯乙酸-乙腈溶液(5.10),10 000 r/min均质提取1 min,再超声提取 15 min,于转速8 000 r/min,温度4 ℃以下,离心10 min。收集上清液于 25 mL比色管(5.12)中,用氨 水(5.6)调节pH至5,加水定容至25 mL,待净化。 精确移取5 mL提取液,以不超过1 mL/min 的流速通过已活化的SCX固相萃取柱(5.18),待样液全 部通过后,依次用5 mL水、5 mL甲醇(5.2)淋洗小柱,弃去全部流出液,减压抽至近干。先后用6 mL 20% 氨水甲醇溶液(5.11)和4 mL乙腈(5.1)洗脱,收集全部洗脱液,于40 ℃下氮气吹干,准确加入1.0 mL 0.1%甲酸-乙腈溶液(5.13)溶解残渣,过0.22 μm 微孔滤膜(5.19),供液相色谱-质谱/质谱仪测定。 8.1.2 牛奶 称取约2 g试样(精确到0.01 g)于50 mL具塞离心管中,准确加入20 μL苯海拉明-D3内标工作 液(5.16)和15 mL 1%三氯乙酸-乙腈溶液(5.10),超声提取15 min。提取液用氨水(5.6)调节pH至 5,待净化。 将全部提取液以不超过1 mL/min 的流速通过已活化的SCX固相萃取柱(5.18),待样液全部通过 后,依次用5 mL 水、5 mL甲醇(5.2)淋洗小柱,弃去全部流出液,减压抽至近干。先后用6 mL 20%氨 水甲醇溶液(5.11)和4 mL乙腈(5.1)洗脱,收集全部洗脱液,于40℃下氮气吹干,准确加入1.0 mL 0.1%甲酸-乙腈溶液(5.13)溶解残渣,过0.22 μm 微孔滤膜(5.19),供液相色谱-质谱/质谱仪测定。 8.2 测定 8.2.1 液相色谱条件 液相色谱条件参考如下: a) 液相色谱柱:C18柱,1.8 μm,2.1 mm×50 mm(内径)或相当者; b) 柱温:30 ℃; c) 流速:0.3 mL/min; d) 流动相:A为0.1%甲酸水溶液,B为乙腈,流动相梯度洗脱程序见表1。 e) 进样量:5 μL。 表1 流动相梯度洗脱程序 时间/min A/% B/% 0.00 95.00 5.00 1.00 95.00 5.00 2.00 60.00 40.00 4.00 60.00 40.00 4.01 95.00 5.00 5.00 95.00 5.00 3SN/T5437—2022 以正式出版文本为准8.2.2 质谱参考条件 质谱参考条件如下: a) 离子源:电喷雾离子源(ESI); b) 扫描方式:正离子扫描; c) 检测方式:多反应监测模式(MRM); d) 雾化气、气帘气、辅助加热气和碰撞气均为高纯氮气;使用前应调节各气体流量以使质谱灵敏 度达到检测要求;喷雾电压、去簇电压、碰撞能量等参数应优化至最优灵敏度,质谱参考参数 参见附录A。 8.2.3 液相色谱-串联质谱测定 8.2.3.1 定性测定 按照液相-质谱/质谱条件测定标准工作溶液和待测液。如果待测液中检测的质量色谱峰保留时间与 标准品的保留时间偏差在±2.5%之内;定性离子对的相对丰度